Technologien

Diese Seite bietet Ihnen eine Übersicht über die Technologien, d.h. die verfügbaren und angewandten Methoden sowie die Laborausstattungen der universitären Arbeitsgruppen.

Allergie

Autoimmunität

Infektionen

Immunbiologie

Transplantation

Tumorimmunologie

Sonstige

AG Entwicklung/Diagnostik/Therapie / Prof. Dr. med. Reinhard Bredehorst
PD Dr. Edzard Spillner 

Labor/Methoden

  • Molekularbiologie
  • Proteinbiochemie
  • Rekominante Expression
  • Chemische Synthese
  • Tierversuche
  • Zellkultur
  • Medizinische Diagnostik

Ausstattung/Geräte

  • Inkubatoren
  • PCR, ELISA, FACS, BiaCore
  • Sterile Werkbank
  • Elektrophoresegeräte
  • Zentrifugen
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AG Experimentelle Immunologie und Hepatologie / Prof. Dr. Gisa Tiegs 

Labor/Methoden

  • Isolierung intrahepatischer Zellpopulationen
  • Magnet-basierte Zellaufreinigung
  • ELISA
  • Multi-Color-FACS-Analysen

Ausstattung/Geräte

  • Real-time RT-PCR System (CFX 96 Real-time System, BioRad)
  • Multifunktionsreader (Lumineszenz, Fluoreszenz, Absorption; infinite M200,TECAN)
  • VersaDoc Imaging System (DNA-Gel-/WesternBlot-Analyse, BioRad)
  • Analysegerät COBAS Mira (ALT,AST, LDH)
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AG Immunmonitoring / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • quantitative RT-PCR (Transplantation
  • ATP-Produktion von Lymphozyten (Immunknow) (Transplantation)
  • Multi-color Durchflusszytometrie (Tumorimmunologie)

Ausstattung/Geräte

  • Real-time PCR Geräte (Transplantation)
  • Luminometer (Transplantation)
  • FACS Canto (Tumorimmunologie)
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AG Charakterisierung neuer Autoantigene / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • rekombinante Produktion von Autoantigenen
  • Überexpression von Autoantigenen in transfizierten Zelllinien
  • genetische Immunisierung zur Herstellung von Antiseren gegen Autoantigene
  • Immunfluoreszenz-Technik zum Nachweis von Auto-AK
  • ELISA-Technik zum Nachweis von Auto-AK

Ausstattung/Geräte:

  • Schüttelinkubator
  • Fluoreszenzmikroskop
  • Photometer
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AG Immunregulation durch extrazelluläre Purin-Nukleotide / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • Multi-color Durchflusszytometrie

Ausstattung/Geräte:

  • FACS Canto
  • FACS Calibur
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AG Leukocytes and Renal Inflammation / Prof. Dr. Rolf A.K. Stahl 

Labor/Methoden

  • Nierenbiospieregister
  • IHC Analyse von humanen Nierenbiospien
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AG Chemokines and Renal Inflammation / Prof. Dr. Ulf Panzer 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle
  • FACS Analysen

Ausstattung/Geräte

  • Laser Mikrodissektionsanlage
  • Durchflusszytometer
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AG Autoimmune Lebererkrankungen / PD Dr. Christoph Schramm 

Labor/Methoden

  • Mausmodelle immunologischer Lebererkrankungen
  • in vitro-Konversion zu Treg, Suppressorassays
  • intrazelluläres Zytokinstaining
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AG Neuroimmunologie / Dr. Manuel Friese 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle (humanisiert, transgen)
  • Durchflusszytometrie
  • Immunohistochemie
  • Primäre Zellkulturen (Neurone, Mikroglia, Immunzellen)
  • T-Zellklonierung

Ausstattung/Geräte

  • EliSPOT
  • Multiplex
  • Fluoreszenzmikroskope
  • Durchflusszytometer
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AG Infektionsimmunologie / Prof. Dr. Hans-Willy Mittrücker 

Labor/Methoden

  • Isolierung und Charakterisierung von Lymphozytenpopulationen
  • Mehrfarben-Durchflusszytometrie
  • Maus-Infektionsmodelle für intrazelluläre Bakterien
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AG Molekulare Immunologie / Prof. Dr. Friedrich Nolte 

Labor/Methoden

  • Zellphänotypisierung/Durchflusszytometrie
  • genetische Immunisierung/rekombinante Antikörper
    (Tumor; Autoimmunität; Infektion)

Ausstattung/Geräte

  • Durchflusszytometer
  • Immunfluoreszenzmikroskop
  • Real-Time PCR Maschine
  • Victor Platten-Reader
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AG Immunregulation / Dr. Eva Tolosa 

Labor/Methoden

  • Multiparameter flow cytometry
  • Cell subset isolation and phenotyping
  • Analysis of T cell function
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AG Stroke and Inflammation / PD Dr. Tim Magnus 

Labor/Methoden

  • Temporary Middle Cerebral Artery Occlusion - Maus
  • Permanent Middle Cerebral Artery Occlusion - Maus
  • Mouse Whole Brain FACS Analysis of Immune cells
  • Immunohistochemistry and -fluorescence
  • Primary Cell Culture (Neurons, Microglia, Glia)

Geräte/Ausstattung

  • Fluorescence Microscope
  • Stroke - Work Spaces with Laser Doppler
  • ELISA-Readers
  • Molecular Biology Equipment (PCR, Western, E'phoresis)
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AG Transplant and Stem Cell Immunobiology / Prof. Dr. Sonja Schrepfer 

Labor/Methoden

  • in vivo Bioluminescence Imaging
  • T Cell Assays (ELISPOT, CBA, MLR) and donorspecific immune response(donorspecific antibodies, FACS, ImmuKnow)
  • Histology, immunohistochemistry and immunofluorescence; Molecular biology(RT-PCR, western blot, membrane dot arrays, ELISA)
  • Microsurgery (mice/rats): Solid organ transplantation (heart, lung, trachea, skin, aorta) and stem cell transplantation (bone marrow tx, adult and embryonic stem cells
  • Cell Culture (Isolation and expansion of lymohocytes, endothelial cells,smooth muscle cells, adult and embryonic stem cells, cardiomyocytes, airway cells); human and rat/mouse/hamster

Ausstattung/Geräte

  • in vivo Lumineszenz und Fluoreszenz
  • Kleintier OP
  • S1 Labor, Molekularbiologie
  • Histologie
  • Zellkultur
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AG Transplantationsimmunolgische Diagnostik, HLA Labor / Prof. Dr. Thomas Eiermann 

Labor/Methoden

  • HLA typing by reverse SSO
  • HLA sequencing
  • HLA antibodies by ELISA
  • HLA antibodies by LUMINEX
  • KIR geneotyping by LUMINEX

Ausstattung/Geräte

  • ABI3130
  • Luminex100
  • ELX800
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AG Herz- und Lungentransplantation / PD Dr. Tobias Deuse 

Labor/Methoden

  • T Cell Assays (ELISPOT, CBA, MLR) and donorspecific immune response donorspecific antibodies, FACS, ImmuKnow)
  • In vivo Bioluminescence Imaging
  • Cell Culture (Isolation and expansion of lymohocytes, endothelial cells, smooth muscle cells, adult and embryonic stem cells, cardiomyocytes, airway cells); human and rat/mouse/hamster
  • Microsurgery (mice/rats): Solid organ transplantation (heart, lung, trachea, skin, aorta) and stem cell transplantation (bone marrow tx, adult and embryonic stem cells)
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AG Hepatobiliäre Transplantation / Dr. Martina Koch / Prof. Dr. Björn Nashan 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle Nierentransplantaton
  • Durchfusszytometrie
  • Molekularbiologie
  • Immunhistologie
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AG Immungenetik / Dr. Hansjörg Thude 

Labor/Methoden

  • DNA-Isolierung, PCR-SSP, PCR-RFLP, Gelelektrophorese, MAIEA, ELISA, FACS, Zellkultur

Ausstattung/Geräte

  • ELISA Reader
  • PCR-Geräte
  • Durchflusszytometer
  • Spannungsgeräte
  • Sterilbänke, Brutschränke
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AG Tumorimmunologie / PD Dr. Heidi Schwarzenbach 

Labor/Methoden

  • Electrophoretic Mobility Shift Assay
  • Protein-Protein Interaktion/ Pull-down Assay
  • Western Blot
  • Transfektion Assay (Reporter-Luziferase Assay, mRNA Expression)
  • Chromatin Immunpräzipitation (ChIP)Quantitative Real-Time PCR

Ausstattung/Geräte

  • ProteanII Gel Elektrophorese System
  • Mastercycler Eppendorf
  • Glomax Luminometer
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AG Tumorgenetik / PD Dr. Heidi Schwarzenbach 

Labor/Methoden

  • Zirkulierende DNA/RNA Extraktion aus Plasma/Serum (Fraktionierung)
  • Isolierung genomischer DNA aus Leukozyten/Tumorgewebe
  • Fluoreszens PCR basierte Mikrosatelliten Analyse für LOH Auswertung am Genetic Analyser
  • miScript Primer Assay
  • quantitative Real Time PCR

Ausstattung/Geräte

  • 3130 Genetic Analyzer Applied Biosystem
  • Mastercycler Eppendorf
  • Nanodrop Photometer
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Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin Hamburg 

Arbeitskreis Helminthen-Immunologie / Dr. Minka Breloer

Labor/Methoden

  • Murine Infektionsmodelle: Strongyloides ratti, Lithomosoides sigmodontis
  • Analyse von Maus Lymphozyten-Aktivierung in vitro: Zytokin-ELISA und Proliferation per 3H ThYmidin inkorporation/CFSE Ausverdünnung, Färbung und Analyse von Oberflächen Proteinen per Durchflusszytometrie.
  • In vivo: adoptiver Transfer von Lymhozyten
  • Konstruktion und screening einfacher und gemischter Knochenmarkschimären

Arbeitskreis Dr. Anke Osterloh

Labor/Methoden

  • FACS, Immunfluoreszenz, ELISA, ELISPOT, SDS-PAGE/Western-Blot, PCR

Arbeitskreis Dr. Marc Jacobsen

Labor/Methoden

  • Vielfarbenflusszytometrie
  • primäre T Zellkultur
  • quantitative PCR
  • Fluoreszenz-aktivierte Zellsortierung

Ausstattung/Geräte

  • FACS Aria
  • FACS LSRII
  • FACS Calibur

Arbeitskreis PD Dr. Thomas Jacobs

Labor/Methoden

  • Infektionmodelle der Malaria
  • Infektionsmodelle der T. cruzi-Infektion
  • Analyse der T-Zellantwort

Ausstattung/Geräte

  • ELISPOT
  • FACS-Sorter
  • FACS-Analyzer
  • Histologie (Cryo, 4 Farben)

Abteilung für Molekulare Parasitologie / Prof. Dr. Egbert Tannich

Labor/Methoden

  • Hormonsubstitution, diverse Operationstechniken bei der Maus, in vitro-Kultivierung von Entamoeba histolytica, molekularbiologische Methoden, Hormonuntersuchungsmethoden, Immunhistologie
  • Intrazelluläre Zytokin-FACS-Analysen, Cell sorting, ELISPOT, ELISA, rt-PCR, Immunhistologie

Ausstattung/Geräte

  • FACS Calibur
  • Cell sorter
  • Light-,Robocycler
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Heinrich-Pette-Institut für Experimentelle Virologie und Immunologie Hamburg 

Molekulare Virologie / Prof. Dr. Thomas Dobner

Labor/Methoden

  • Gesamtspektrum virologischer Methoden
  • Gesamtspektrum molekularbiologischer Methoden
  • Herstellung von Adenovirus-Vektoren der 1. und 2. Generation
  • Herstellung konditional replikationskompetenter Adenovirus-Vektoren (CRAds)
  • Tiermodelle zur Testung antitumoraler Wirksamkeit

Ausstattung/Geräte

  • Komplett ausgestattete S2-Laboratorien für Virusanzucht and Gewebekultur
  • Komplett ausgestattete Laboratorien für gentechnische Arbeiten der Sicherheitsstufe 2
  • FACS, konfokale Laserscanning Mikroskopie

Zellbiologie und Virologie / Prof. Dr. Joachim Hauber

Labor/Methoden

  • S3 - HIV Infektionsexperimente
  • Primärzellkultur
  • Lentiviraler Gentransfer
  • in vitro Generierung von Dendritischen Zellen

Ausstattung/Geräte

  • FACS-Aria Cell Sorter
  • RoboSep Cell Separator
  • ÄKTA HPLC
  • 7500 Fast Real-Time PCR System (Applied Biosystems)
  • BIACORE X system

FG Molekulare Pathologie / Dr. Stocking

Labor/Methoden

  • Entwicklung Gamma- und Lentivirale Vektoren
  • Knochenmarktransplantation der Maus

Tumorvirologie / PD Dr. Michael Bruns

Labor/Methoden

  • Immunhistologie, Molekularbiologie, FACS
  • Immunhistologie, Molekularbiologie, Virologie, Serologie

Ausstattung/Geräte

  • Mausstallungen
  • Microtom
  • Kryostat
  • EM-Kryo-Mikroskopie und Fluoreszenz-Mikroskope
  • FACS-Canto
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Forschungszentrum Borstel - Leibniz-Zentrum für Medizin und Biowissenschaften 

Strukturbiochemie / Prof. Dr. Otto Holst

Labor/Methoden

  • Für alle Themen und Projekte: Nass-chemische Analysen inkl. Photometrie, GC, und GC-MS. Reiniung von Molekülen mittels Chromatographie. Strukturanalysen mittels NMR-Spektroskopie und Massenspektrometrie.

Ausstattung/Geräte

  • Für alle Themen und Projekte: HPLC, HPAEC, Gas-chromatographie, MSD GLC-MS, FPLC, Zugang zu 360 and 700 MHz kryo probe NMR Spektrometern, und zu MALDI-TOF and ESI-Cyclotron-FT Massenspektrometern.

Infektionsimmunologie / Dr. Christoph Hölscher

Labor/Methoden

  • Infektionsmodelle der Tuberkulose und Chagas Krankeit
  • Embryonale Stammzellkultur und gene targeting
  • In vitro Differenzierung, Infektion und Analyse von Knochenmark-Makrophagen
    und Dendritischen Zellen; in vitro Differenzierung von TH1, TH2 und TH17 Zellen
  • Cytometric bead arrays
  • Funktionelle T Zell Analysen (Proliferation, Antigen-spezifische Zytokin-Seretions assays,
    ELISPOTs, Zytotoxische Analysen, Herstellung von Mtb-spezifischen MHC Klasse I Tetrameren
    und Klasse II Multimeren und Markierung spezifischer CD4+ und CD8+ T

Ausstattung/Geräte

  • FACS Canto unter BSL3 Bedingungen
  • FACS Array unter BSL3 Bedingungen
  • Intravitale Mikroskopie unter BSL3 Bedingunen
  • Life Cell Imaging unter BSL3 Bedingunen
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